凝膠電泳(英語:Gel electrophoresis)。凝膠電泳通常用于分析用途,但也可以作為制備技術,在采用某些方法(如質譜(MS)、聚合酶鏈式反應(PCR)、克隆技術、DNA測序或者免疫印跡)檢測之前部分提純分子???、 脈沖電場凝膠電泳。
中文名稱 | 凝膠電泳 | 外文名稱 | Gel electrophoresis |
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或稱 | 膠體電泳 | 用于 | 分離不同物理性質 |
分為 | 瓊脂糖和聚丙烯酰胺凝膠電泳 |
聚丙烯酰胺凝膠電泳(polyacryamide gel electropHoresis, PAGE)是由丙烯酰胺單體和交聯劑甲叉...
電泳漆又叫電泳涂料。 早期以陽極電泳涂料為主,目前逐漸被陰極電泳涂料取代。 電泳涂料又可分為單組份和雙組份兩種,目前以雙組份為主。 從顏色可分:黑色、灰色、白色和彩色。 從原料...
帶電顆粒在電場作用下,向著與其電性相反的電極移動,稱為電泳(electrophoresis, EP)。利用帶電粒子在電場中移動速度不同而達到分離的技術稱為電泳技術。• 電泳原理: 電泳是電...
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實驗 7 聚丙烯酰胺凝膠電泳 原理 一 聚丙烯酰胺凝膠電泳( polyacrylamide gel electrophoresis, 簡稱 PAGE),由稱盤狀電泳。 這種電泳是在區(qū)帶電泳的基礎上, 以孔徑大小不同的聚丙烯酰胺凝膠作為支持物, 采用電泳 基質的不連續(xù)體系(即凝膠層的不連續(xù)性、緩沖液離子成分的不連續(xù)性、 pH 的不連續(xù)性及 電位梯度的不連續(xù)性) ,使樣品在不連續(xù)的兩相間積聚濃縮成很薄的起始區(qū)帶(厚度為 10-2cm),然后再進行電泳分離。 圓盤電泳名稱來源即由于此法的原理是依靠基質的不連續(xù)性( discontinuity ),湊巧在垂 直柱形凝膠上分散出的區(qū)帶也很象圓盤狀( discoid shape),取“不連續(xù)性”和“圓盤狀”的 英文字頭“ disc”。因此英文名稱為“ disc electrophoresis”,中文直譯為盤狀電泳。 儀器裝置:如 圖 A 所示,上下兩個
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電泳的工藝流程 -- 鋁合金電泳 .txt 對的時間遇見對的人是一生幸福; 對的時間遇見錯的人是 一場心傷;錯的時間遇見對的人是一段荒唐;錯的時間遇見錯的人是一聲嘆息。電泳的工藝 流程 -- 鋁合金電泳 首先:電泳涂裝 (electro-coating) 是利用外加電場使懸浮于電泳液中的顏料和樹脂等微粒定 向遷移并沉積于電極之一的基底表面的涂裝方法。電泳涂裝的原理發(fā)明于是 20 世紀 30年代 末,但開發(fā)這一技術并獲得工業(yè)應用是在 1963 年以后,電泳涂裝是近 30年來發(fā)展起來的一 種特殊涂膜形成方法,是對水性涂料最具有實際意義的施工工藝。具有水溶性、無毒、易于 自動化控制等特點,迅速在汽車、建材、五金、家電等行業(yè)得到廣泛的應用。 電泳涂裝是把工件和對應的電極放入水溶性涂料中,接上電源后,依靠電場所產生的物理化 學作用,使涂料中的樹脂、顏填料在以被涂物為電極的表面上均勻析出沉積形成不溶于
聚丙酰胺凝膠電泳
中性聚丙烯酰胺凝膠電泳
安裝電泳裝置和配制凝膠溶液
凝膠電泳被廣泛用于分子生物學、遺傳學和生物化學:1.大的DNA或者RNA分子通常利用瓊脂糖凝膠電泳(agarose gel electrophoresis)分離,也可以使用聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE)。2.蛋白質的凝膠電泳通常在加入十二烷基硫酸鈉的聚丙烯酰胺凝膠中進行(SDS-PAGE),或者非變性凝膠電泳,或二維電泳。 SDS-PAGE 蛋白質凝膠電泳圖。 3.毛細管電泳 4.酶譜
法(zymography) 5.變性梯度膠凝電泳(Denaturing Gradient Gel Electrophoresis,DGGE) 瓊脂糖和聚丙烯酰胺可以制成各種形狀、大小和孔隙度。瓊脂糖凝膠分離DNA片度大小范圍較廣,不同濃度瓊脂糖凝膠可分離長度從200bp至近50kb的DNA片段。瓊脂糖通常用水平裝置在強度和方向恒定的電場下電泳。聚丙烯酰胺分離小片段DNA(5-500bp)效果較好,其分辯力極高,甚至相差1bp的DNA片段就能分開。聚丙烯酰胺凝膠電泳很快,可容納相對大量的DNA,但制備和操作比瓊脂糖凝膠困難。聚丙烯酰胺凝膠采用垂直裝置進行電泳。一般實驗室多用瓊脂糖水平平板凝膠電泳裝置進行DNA電泳。
瓊脂糖主要在DNA制備電泳中作為一種固體支持基質,其密度取決于瓊脂糖的濃度。在電場中,在中性pH值下帶負電荷的DNA向陽極遷移,其遷移速率由下列多種因素決定:
1、 DNA的分子大小: 線狀雙鏈DNA分子在一定濃度瓊脂糖凝膠中的遷移速率與DNA分子量對數成反比,分子越大則所受阻力越大,也越難于在凝膠孔隙中蠕行,因而遷移得越慢。
2、 瓊脂糖濃度
一個給定大小的線狀DNA分子,其遷移速度在不同濃度的瓊脂糖凝膠中各不相同。DNA電泳遷移率的對數與凝膠濃度成線性關系。凝膠濃度的選擇取決于DNA分子的大小。分離小于0.5kb的DNA片段所需膠濃度是1.2-1.5%,分離大于10kb的DNA分子所需膠濃度為0.3-0.7%, DNA片段大小間于兩者之間則所需膠濃度為0.8-1.0%。
3、DNA分子的構象
DNA分子處于不同構象時,它在電場中移動距離不僅和分子量有關,還和它本身構象有關。相同分子量的線狀、開環(huán)和超螺旋DNA在瓊脂糖凝膠中移動速度是不一樣的,超螺旋DNA移動最快,而開環(huán)雙鏈DNA移動最慢。如在電泳鑒定質粒純度時發(fā)現凝膠上有數條DNA帶難以確定是質粒DNA不同構象引起還是因為含有其他DNA引起時,可從瓊脂糖凝膠上將DNA帶逐個回收,用同一種限制性內切酶分別水解,然后電泳,如在凝膠上出現相同的DNA圖譜,則為同一種DNA。
雙向差異凝膠電泳基本簡介
雙向差異凝膠電泳(two dimension difference gel electrophoresis, 2D-DIGE)是一種新出現的熒光標記的定量蛋白質組學技術,比經典的2-DE具有更高的動力學范圍和靈敏性。DIGE系統基于熒光差異凝膠電泳。
(2D.DIGE)技術,是利用電荷和分子量的差異分離蛋白質混合物,并通過多通道激光掃描分析不同蛋白質的第二向SDS-PAGE凝膠圖像。DIGE系統結合了新型熒光技術、樣品多路技術(sample multiplexing)和圖像分析等特有的技術,是一套優(yōu)于經典的2-DE的完整的系統。DIGE系統的工作流程圖見圖示。