水平板凝膠電泳是指在水平方向放置的凝膠平板中進(jìn)行的電泳。
聚丙烯酰胺凝膠電泳(polyacryamide gel electropHoresis, PAGE)是由丙烯酰胺單體和交聯(lián)劑甲叉...
這就要看設(shè)置的層高或是怎樣調(diào)整的標(biāo)高,兩者是不能有重疊的。
還是選中再重新三點(diǎn)定義標(biāo)高,定義的一樣就成水平的了
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實(shí)驗(yàn) 7 聚丙烯酰胺凝膠電泳 原理 一 聚丙烯酰胺凝膠電泳( polyacrylamide gel electrophoresis, 簡(jiǎn)稱 PAGE),由稱盤(pán)狀電泳。 這種電泳是在區(qū)帶電泳的基礎(chǔ)上, 以孔徑大小不同的聚丙烯酰胺凝膠作為支持物, 采用電泳 基質(zhì)的不連續(xù)體系(即凝膠層的不連續(xù)性、緩沖液離子成分的不連續(xù)性、 pH 的不連續(xù)性及 電位梯度的不連續(xù)性) ,使樣品在不連續(xù)的兩相間積聚濃縮成很薄的起始區(qū)帶(厚度為 10-2cm),然后再進(jìn)行電泳分離。 圓盤(pán)電泳名稱來(lái)源即由于此法的原理是依靠基質(zhì)的不連續(xù)性( discontinuity ),湊巧在垂 直柱形凝膠上分散出的區(qū)帶也很象圓盤(pán)狀( discoid shape),取“不連續(xù)性”和“圓盤(pán)狀”的 英文字頭“ disc”。因此英文名稱為“ disc electrophoresis”,中文直譯為盤(pán)狀電泳。 儀器裝置:如 圖 A 所示,上下兩個(gè)
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通過(guò)系列模型試驗(yàn),對(duì)斜坡上尾部封閉式平板結(jié)構(gòu)波浪上托力沿板寬分布進(jìn)行了詳細(xì)分析,提出板下最大沖擊壓強(qiáng)和最大總上托力并不一定同時(shí)出現(xiàn),其分布形態(tài)可分為局部沖擊型和均勻型。由于封閉空氣層和底部斜坡影響,較大總上托力形成機(jī)理不盡一致,其均勻分布寬度也不相同,可分為氣壓型和反射型兩類,由此提出分類標(biāo)準(zhǔn),并分別得到壓強(qiáng)分布的計(jì)算公式。
聚丙酰胺凝膠電泳
中性聚丙烯酰胺凝膠電泳
安裝電泳裝置和配制凝膠溶液
凝膠電泳被廣泛用于分子生物學(xué)、遺傳學(xué)和生物化學(xué):1.大的DNA或者RNA分子通常利用瓊脂糖凝膠電泳(agarose gel electrophoresis)分離,也可以使用聚丙烯酰胺凝膠電泳(PAGE)。2.蛋白質(zhì)的凝膠電泳通常在加入十二烷基硫酸鈉的聚丙烯酰胺凝膠中進(jìn)行(SDS-PAGE),或者非變性凝膠電泳,或二維電泳。 SDS-PAGE 蛋白質(zhì)凝膠電泳圖。 3.毛細(xì)管電泳 4.酶譜
法(zymography) 5.變性梯度膠凝電泳(Denaturing Gradient Gel Electrophoresis,DGGE) 瓊脂糖和聚丙烯酰胺可以制成各種形狀、大小和孔隙度。瓊脂糖凝膠分離DNA片度大小范圍較廣,不同濃度瓊脂糖凝膠可分離長(zhǎng)度從200bp至近50kb的DNA片段。瓊脂糖通常用水平裝置在強(qiáng)度和方向恒定的電場(chǎng)下電泳。聚丙烯酰胺分離小片段DNA(5-500bp)效果較好,其分辯力極高,甚至相差1bp的DNA片段就能分開(kāi)。聚丙烯酰胺凝膠電泳很快,可容納相對(duì)大量的DNA,但制備和操作比瓊脂糖凝膠困難。聚丙烯酰胺凝膠采用垂直裝置進(jìn)行電泳。一般實(shí)驗(yàn)室多用瓊脂糖水平平板凝膠電泳裝置進(jìn)行DNA電泳。
瓊脂糖主要在DNA制備電泳中作為一種固體支持基質(zhì),其密度取決于瓊脂糖的濃度。在電場(chǎng)中,在中性pH值下帶負(fù)電荷的DNA向陽(yáng)極遷移,其遷移速率由下列多種因素決定:
1、 DNA的分子大小: 線狀雙鏈DNA分子在一定濃度瓊脂糖凝膠中的遷移速率與DNA分子量對(duì)數(shù)成反比,分子越大則所受阻力越大,也越難于在凝膠孔隙中蠕行,因而遷移得越慢。
2、 瓊脂糖濃度
一個(gè)給定大小的線狀DNA分子,其遷移速度在不同濃度的瓊脂糖凝膠中各不相同。DNA電泳遷移率的對(duì)數(shù)與凝膠濃度成線性關(guān)系。凝膠濃度的選擇取決于DNA分子的大小。分離小于0.5kb的DNA片段所需膠濃度是1.2-1.5%,分離大于10kb的DNA分子所需膠濃度為0.3-0.7%, DNA片段大小間于兩者之間則所需膠濃度為0.8-1.0%。
3、DNA分子的構(gòu)象
DNA分子處于不同構(gòu)象時(shí),它在電場(chǎng)中移動(dòng)距離不僅和分子量有關(guān),還和它本身構(gòu)象有關(guān)。相同分子量的線狀、開(kāi)環(huán)和超螺旋DNA在瓊脂糖凝膠中移動(dòng)速度是不一樣的,超螺旋DNA移動(dòng)最快,而開(kāi)環(huán)雙鏈DNA移動(dòng)最慢。如在電泳鑒定質(zhì)粒純度時(shí)發(fā)現(xiàn)凝膠上有數(shù)條DNA帶難以確定是質(zhì)粒DNA不同構(gòu)象引起還是因?yàn)楹衅渌鸇NA引起時(shí),可從瓊脂糖凝膠上將DNA帶逐個(gè)回收,用同一種限制性內(nèi)切酶分別水解,然后電泳,如在凝膠上出現(xiàn)相同的DNA圖譜,則為同一種DNA。
雙向差異凝膠電泳基本簡(jiǎn)介
雙向差異凝膠電泳(two dimension difference gel electrophoresis, 2D-DIGE)是一種新出現(xiàn)的熒光標(biāo)記的定量蛋白質(zhì)組學(xué)技術(shù),比經(jīng)典的2-DE具有更高的動(dòng)力學(xué)范圍和靈敏性。DIGE系統(tǒng)基于熒光差異凝膠電泳。
(2D.DIGE)技術(shù),是利用電荷和分子量的差異分離蛋白質(zhì)混合物,并通過(guò)多通道激光掃描分析不同蛋白質(zhì)的第二向SDS-PAGE凝膠圖像。DIGE系統(tǒng)結(jié)合了新型熒光技術(shù)、樣品多路技術(shù)(sample multiplexing)和圖像分析等特有的技術(shù),是一套優(yōu)于經(jīng)典的2-DE的完整的系統(tǒng)。DIGE系統(tǒng)的工作流程圖見(jiàn)圖示。